Avaliação das reações de Hemaglutinação Indireta (HI) e Aglutinação Modificada (MAT) na detecção de anticorpos IgG anti-T. gondii em exsudatos cárneos bovinos
Palavras-chave:
toxoplasmose, exsudato cárneo, segurança alimentar, testes de aglutinação.
Resumo
Toxoplasmose é uma zoonose parasitária com ampla distribuição mundial provocada pelo Toxoplasma gondii, considerado um dos protozoários mais bem sucedidos do planeta, pois infecta cerca de um terço da população mundial. Dentre as formas de transmissão, o consumo de carne mal cozida, contendo cistos, tem sido considerado um fator de risco para aquisição desta zoonose. Uma abordagem alternativa para o controle da toxoplasmose pela ingestão de carne bovina seria a sorologia dos bovinos, já que animais soropositivos albergam cistos teciduais. Contudo, a obtenção de soro para esta avaliação, nem sempre é factível, dada a dificuldade de coleta de sangue durante a linha de abate e sua ausência em cortes comerciais. O exsudato cárneo é uma alternativa para detecção de anticorpos anti - T. gondii em cortes comerciais de carne, que foi a proposta deste estudo para avaliar o desempenho dos testes de Hemaglutinação Indireta (HI) e Aglutinação Modificada (MAT) quando comparados ao ELISA usando exsudato cárneo. Este estudo mostrou que a acurácia dos testes de aglutinação não foi viável devido aos baixos índices de sensibilidade e especificidade quando comparados ao ELISA. Estes dados demonstram a importância da escolha de testes eficientes como ELISA para aplicação no controle da qualidade e inocuidade de cortes comerciais de carne bovina.Referências
1. Assolini JP, Concato VM, Gonçalves MD, Carloto ACM, Conchon-Costa I, Pavanelli WR et al. “Nanomedicine advances in toxoplasmosis: diagnostic, treatment, and vaccine applications”. Parasitol Res. 2017;116(6):1603-1615. https://dx.doi. org/10.1007/s00436-017-5458-2
2. Djurković-Djaković O, Dupouy-Camet J, Giessen JV, Dubey JP. Toxoplasmosis: overview from a One Health perspective. Food Waterborne Parasitol. 2019;15:e00054. https://dx.doi.org/10.1016/j. fawpar.2019.e00054
3. Verma SK, Sweeny AR, Lovallo MJ, Calero-Bernal R, Kwok OC, Jiang T et al. Seroprevalence, isolation and co-infection of multiple Toxoplasma gondii strains in individual bobcats (Lynx rufus) from Mississippi, USA. Int J Parasitol. 2017;47(5):297-
303. https://dx.doi.org/ 10.1016/j.ijpara.2016.12.007
4. Hill DE, Dubey JP. Toxoplasma gondii: transmission, diagnosis and prevention. Clin Microbiol Infect. 2002;8(10):634–40. https://dx.doi.org/10.1046/j. 1469-0691.2002.00485.x
5. Kijlstra A, Jongert E. Control of the risk of human toxoplasmosis transmitted by meat. Int J Parasitol. 2008;38(12):1359-70.https://dx.doi.org/10.1016/j. ijpara.2008.06.002
6. Tenter AM, Heckeroth AR, Weiss LM. Toxoplasma gondii: from animals to humans. Int J Parasitol. 2000;30(12-13):1217-58. https://dx.doi.org/10.1016/s0020-7519(00)00124-7
7. McAllister MM. A decade of discoveries in veterinary protozoology changes our concept of “subclinical” toxoplasmosis. Vet Parasitol. 2005;132:241-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.07.003
8. Tenter AM. Toxoplasma gondii in animals used for human consumption. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104(2):364-9. https://dx.doi.org/ 10.1590/s0074-02762009000200033
9. Dubey JP, Lindsay DS, Speer CA. Structures of Toxoplasma gondii tachyzoites, bradyzoites, and sporozoites and biology and development of tissue cysts. Clin Microbiol Rev.1998;11(2):267–99.
10. Dubey JP, Thulliez P. Persistence of tissue cysts in edible tissues of cattle fed Toxoplasma gondii oocysts. Am J Vet Res. 1993;54(2):270-3.
11. Schlüter D, Däubener W, Schares G, Groß U, Pleyer U, Lüder C. Animals are key to human toxoplasmosis. Int J Med Microbiol. 2014;304(7):917-29. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijmm.2014.09.002
12. Marciano MAM. Pesquisa de IgG anti-Toxoplasma gondii em exsudato cárneo para monitoramento da qualidade da carne bovina. [dissertação de mestrado]. São Paulo (SP): Universidade de São Paulo; 2013.[resumo]. Disponível em: http://www.imt.usp.br/wp-content/uploads/bib/Catalogo_Dis_Tes_IMTSP_v1.pdf
13. Mecca JN, Meireles LR, de Andrade Jr HF. Quality control of Toxoplama gondii in meat packages: standardization of an ELISA test and its use for detection in rabbit meat cuts. Meat Sci. 2011;88(3):584–
9. https://dx.doi.org/10.1016/j.meatsci.2011.01.016
14. Desmonts G, Remington JS. Direct agglutination test for diagnosis of Toxoplasma infection: method for increasing sensitivity and specificity. J Clin Microbiol. 1980;11(6):562–8. https://dx.doi. org/ 10.1128/JCM.11.6.562-568.1980
15. Stelzer S, Basso W, Benavides J, Ortega-Mora LM, Maksimov P, Gethmann J et al. Toxoplasma gondii infection and toxoplasmosis in farm animals: risk factors and economic impact. Food Waterborne Parasitol. 2019;15:e00037. https://doi.org/10.1016/j.fawpar.2019.e00037
16. Dubey JP. Isolation of Toxoplasma gondii from a naturally infected beef cow. J Parasitol. 1992;78(1):151-3.
2. Djurković-Djaković O, Dupouy-Camet J, Giessen JV, Dubey JP. Toxoplasmosis: overview from a One Health perspective. Food Waterborne Parasitol. 2019;15:e00054. https://dx.doi.org/10.1016/j. fawpar.2019.e00054
3. Verma SK, Sweeny AR, Lovallo MJ, Calero-Bernal R, Kwok OC, Jiang T et al. Seroprevalence, isolation and co-infection of multiple Toxoplasma gondii strains in individual bobcats (Lynx rufus) from Mississippi, USA. Int J Parasitol. 2017;47(5):297-
303. https://dx.doi.org/ 10.1016/j.ijpara.2016.12.007
4. Hill DE, Dubey JP. Toxoplasma gondii: transmission, diagnosis and prevention. Clin Microbiol Infect. 2002;8(10):634–40. https://dx.doi.org/10.1046/j. 1469-0691.2002.00485.x
5. Kijlstra A, Jongert E. Control of the risk of human toxoplasmosis transmitted by meat. Int J Parasitol. 2008;38(12):1359-70.https://dx.doi.org/10.1016/j. ijpara.2008.06.002
6. Tenter AM, Heckeroth AR, Weiss LM. Toxoplasma gondii: from animals to humans. Int J Parasitol. 2000;30(12-13):1217-58. https://dx.doi.org/10.1016/s0020-7519(00)00124-7
7. McAllister MM. A decade of discoveries in veterinary protozoology changes our concept of “subclinical” toxoplasmosis. Vet Parasitol. 2005;132:241-7. https://dx.doi.org/10.1016/j.vetpar.2005.07.003
8. Tenter AM. Toxoplasma gondii in animals used for human consumption. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104(2):364-9. https://dx.doi.org/ 10.1590/s0074-02762009000200033
9. Dubey JP, Lindsay DS, Speer CA. Structures of Toxoplasma gondii tachyzoites, bradyzoites, and sporozoites and biology and development of tissue cysts. Clin Microbiol Rev.1998;11(2):267–99.
10. Dubey JP, Thulliez P. Persistence of tissue cysts in edible tissues of cattle fed Toxoplasma gondii oocysts. Am J Vet Res. 1993;54(2):270-3.
11. Schlüter D, Däubener W, Schares G, Groß U, Pleyer U, Lüder C. Animals are key to human toxoplasmosis. Int J Med Microbiol. 2014;304(7):917-29. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijmm.2014.09.002
12. Marciano MAM. Pesquisa de IgG anti-Toxoplasma gondii em exsudato cárneo para monitoramento da qualidade da carne bovina. [dissertação de mestrado]. São Paulo (SP): Universidade de São Paulo; 2013.[resumo]. Disponível em: http://www.imt.usp.br/wp-content/uploads/bib/Catalogo_Dis_Tes_IMTSP_v1.pdf
13. Mecca JN, Meireles LR, de Andrade Jr HF. Quality control of Toxoplama gondii in meat packages: standardization of an ELISA test and its use for detection in rabbit meat cuts. Meat Sci. 2011;88(3):584–
9. https://dx.doi.org/10.1016/j.meatsci.2011.01.016
14. Desmonts G, Remington JS. Direct agglutination test for diagnosis of Toxoplasma infection: method for increasing sensitivity and specificity. J Clin Microbiol. 1980;11(6):562–8. https://dx.doi. org/ 10.1128/JCM.11.6.562-568.1980
15. Stelzer S, Basso W, Benavides J, Ortega-Mora LM, Maksimov P, Gethmann J et al. Toxoplasma gondii infection and toxoplasmosis in farm animals: risk factors and economic impact. Food Waterborne Parasitol. 2019;15:e00037. https://doi.org/10.1016/j.fawpar.2019.e00037
16. Dubey JP. Isolation of Toxoplasma gondii from a naturally infected beef cow. J Parasitol. 1992;78(1):151-3.
Publicado
2019-03-29
Como Citar
Moraes MARCIANO, M. A., Franco de ANDRADE JUNIOR, H., & MEIRELES, L. R. (2019). Avaliação das reações de Hemaglutinação Indireta (HI) e Aglutinação Modificada (MAT) na detecção de anticorpos IgG anti-T. gondii em exsudatos cárneos bovinos. Revista Do Instituto Adolfo Lutz, 78(1), 1-6. https://doi.org/10.18241/rial.v78i1.34241
Edição
Seção
COMUNICAÇÃO BREVE
