Padronização de teste para quantificar anticorpos anti-poliovírus utilizando vírus vacinal

Elaine  dos Santos LIMA; Maria Isabel  de MORAES-PINTO; Roberta  Morozetti BLANCO; Celso Francisco  Hernandes GRANATO; Eliete  Caló ROMERO

doi:10.18241/rial.v78i1.34232

Elaine dos Santos LIMA Secretaria de Estado da Saúde
Maria Isabel de MORAES-PINTO Secretaria de Estado da Saúde
Roberta Morozetti BLANCO Secretaria de Estado da Saúde
Celso Francisco Hernandes GRANATO Secretaria de Estado da Saúde
Eliete Caló ROMERO Secretaria de Estado da Saúde

DOI: https://doi.org/10.18241/rial.v78i1.34232

Palavras-chave: poliovírus, poliovírus selvagem, poliomielite, poliovírus vacinal.

Resumo

A poliomielite é uma doença endêmica no Afeganistão e no Paquistão, apesar dos esforços para ser erradicada, representando uma ameaça para outros países principalmente devido às viagens internacionais. A Organização Mundial da Saúde (OMS) tem como objetivo erradicar a poliomielite causada pelo poliovírus selvagem no mundo. O requisito essencial para a erradicação da poliomielite é a eliminação da cepa do poliovírus selvagem, que é empregada no teste padrão-ouro. Com o intuito de auxiliar na erradicação do poliovírus selvagem, o objetivo deste estudo foi modificar o teste padrão-ouro usando o poliovírus derivado da vacina oral atenuada. Foram testados 63 soros pelo ensaio de neutralização utilizando-se antígenos vacinais. A concordância do sorotipo 1 (k=0,74) foi considerada substancial, enquanto o sorotipo 2 (k=1,00) e sorotipo 3 (k= 0,95) foram consideradas quase perfeitas. A sensibilidade dos testes de soroneutralização utilizando os sorotipos 1, 2 e 3 foi de 94,83%, 100,00% e 100,00%, respectivamente. Em conclusão, o ensaio com antígenos vacinais pode ser usado como procedimento laboratorial seguro, especialmente em estudos de vigilância em larga escala.

Referências

Racaniello VR. The poliovirus receptor: a hook, or an unzipper? Structure. 1996;4(7):769-73. https:// doi.org/10.1016/S0969-2126(96)00083-4

Hogle JM, Chow M, Filman DJ. The structure of poliovirus. Sci Am. 1987;256(3):42-9. https://doi. org/10.1038/scientificamerican0387-42

Salk JE. Studies in human subjects on active immunization against poliomyelitis. I. A preliminary report of experiments in progress. J Am Med Assoc. 1953;151(13):1081-98.

Sabin AB. Properties and behavior of orally administered attenuated poliovirus vaccine. J Am Med Assoc. 1957;164(11):1216-23. https://doi. org/10.1001/jama.1957.62980110008008

Friedrich F. Rare adverse events associated with oral poliovirus vaccine in Brazil. Braz J Med Biol Res. 1997;30(6):695-703. http://dx.doi. org/10.1590/S0100-879X1997000600001

Nkowane BM, Wassilak SG, OrensteinWA, Bart KJ, Schonberger LB, Hinman AR et al. Vaccine-associated paralytic poliomyelitis. United States: 1973 through 1984. JAMA. 1987;257(10):1335–40. http://dx.doi.org/10.1001/ jama.1987.03390100073029

Costa-Carvalho BT, Sullivan KE, Fontes PM, Aimé-Nobre F, Gonzales IGS, Lima ES et al. Low rates of poliovirus antibodies in primary immunodeficiency patients on regular intravenous immunoglobulin treatment. J Clin Immunol. 2018;38(5):628-34. https://doi.org/10.1007/ s10875-018-0531-x

Kew OM, Sutter RW, Nottay BK, McDonough MJ, Prevots DR, Quick L et al. Prolonged replication

of a type 1 vaccine-derived poliovirus in an immunodeficient patient. J Clin Microbiol. 1998;36(10):2893–9.

Dias-Tosta E, Kückelhaus CS. Neurological morbidity in vaccine-associated paralytic poliomyelitis in Brazil from 1989 up to 1995. Arq Neuropsiquiatr. 2004;62(2):414-20. http://dx.doi. org/10.1590/S0004-282X2004000300008

Ministério da Saúde - Brasil. Informe Técnico da introdução da vacina inativada poliomielite. [acesso 2018 Jun 22]. Disponível em: http:// www.sgc.goias.gov.br/upload/arquivos/2012-08/ infor me-te cnico-int ro ducao-da-vacina- inativada-poliomielite-vip-2012.pdf

Iniciativa de Erradicação Global da Pólio. Pólio hoje. [acesso 2018 Jun 05]. Disponível em: http:// polioeradication.org/polio-today/polio-now/ this-week/

Word Health Organization - WHO. Polio Global Eradication Iniciative-Polio Eradication & Endgame Strategic Plan 2013-2018.[acesso 2018 Jun 13]. Disponível em: http://polioeradication. org/wp-content/uploads/2016/07/PEESP_EN_ A4.pdf

World Health Organization – WHO. Weekly epidemiological record. 2016;91(19):249-256. [acesso 2018 Mai 28]. Disponível em: http://www. who.int/wer/2016/wer9119/en/

Word Health Organization - WHO. Global action plan for laboratory containment of wild polioviruses. 2.ed. Geneva:WHO;2003. [acesso 2018 Mai 29]. Disponível em: h t t p://a p ps.w h o .in t/ir i s/b i ts t r e a m/ handle/10665/68205/WHO_V_03.11_eng.pd f;jsessionid=2900A123BAB08299F0BBC7A87 BC1D51F?sequence=1

Word Health Organization – WHO. Polio laboratory manual. 2.ed . Geneva: WHO; 2004. [acesso 2018 Mai 29]. Disponível em: http://apps. who.int/iris/bitstream/handle/10665/68762/ WHO_IVB_04.10.pdf?sequence

Machado CM. Reimmunization after bone marrow transplantation--current recommendations and perspectives. Braz J Med Biol Res. 2004;37(1):151-8. http://dx.doi.org/10.1590/ S0100-879X2004000100021

Reed L, Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Hyg. 1938;27(3):493-7.

Landis JR, Koch GG. The measurement of observer agreement for categorical data. Biometrics. 1977;33(1):159-74.

Fleiss JL. The measurement of interrater agreement. In: Fleiss JL, Statistical Methods for Rates and Proportions. New York: John Wiley;1981.p.212-36.

Siegel S, Castellan N. Nonparametric statistics for the behavioral sciences. 2.ed. New York: McGraw-Hill;1988.

Sistema de Informação de agravos de Notificação – SINAM. Paralisia flácida aguda/Poliomielite. [acesso 2018 Jun 5]. Disponível em: http://portalsinan. saude.gov.br/paralisia-flacida-aguda-poliomielite

Barbosa V, Stewien KE, Rosenburg CP. Estado vacinal, tipo de habitação e nível cultural da mãe e sua relação com o estado imunitário à poliomielite, em uma amostra de escolares do município de São Paulo, Brasil. Rev Saúde Pública. 1977;11:330-7.

Paul JR, Trask JD. The neutralization test in poliomyelitis. Comparative results with four strains

of the virus. J Exp Med. 1935; 61(4):447–64. https://doi.org/10.1084/jem.61.4.447

Howitt BF. Poliomyelitis: in vitro neutralization tests, using normal adult and convalescent human serums. Cal West Med. 1935;43(6):407-11.

Herremans MM, Reimerink JH, Ras A, Van Der Avoort HG, Kimman TG, Van Loon AM et al. Evaluation of a poliovirus-binding inhibition assay as an alternative to the virus neutralization test. Clin Diagn Lab Immunol. 1997;4(6):659–64.

Hashido M, Horie H, Abe S, Doi Y, Hashizume S, Agboatwalla M et al Evaluation of an enzyme- linked immunosorbent assay based on binding inhibition for type-specific quantification of poliovirus neutralization-relevant antibodies. Microbiol Immunol. 1999;43(1):73–7. https://doi. org/10.1111/j.1348-0421.1999.tb02375.x

Ivanov AP, Dragunsky EM. ELISA as a possible alternative to the neutralization test for evaluating the immune response to poliovirus vaccines. Expert Rev Vaccines. 2005;4(2):167- 72. https:/doi.org/10.1586/14760584.4.2.167

Schepp RM, Berbers GAM, Ferreira JA, Reimerinka JH, Van der Klis FR. A novel multiplex poliovirus binding inhibition assay applicable for large serosurveillance and vaccine studies, without the use of live poliovirus. J Virol Methods. 2017;241:15–23. https://doi.org/10.1016/j. jviromet.2016.12.006